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real-time PCR实验检测
Real-Time PCR 技术，又称实时定量荧光PCR，是指在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号累积实时监测整个PCR进程，zui后通过标准曲线对未知模板进行总量分析或通过Ct值对模板进行相对定量。
服务说明
荧光定量PCR实验步骤
1、总RNA抽提（枪头和离心管均经过湿热灭菌，无RNA酶）
1）取匀浆器，加入1ml的Trizol Reagent，置冰上预冷。
2）取100mg组织，加入到匀浆器中。
3）充分研磨直至无可见组织块。
4）13000g离心10min取上清。
5）加入250 μl，颠倒离心管15s，充分混匀，静置3min。
6）4℃下13000g离心8min。
7）将上清转移到一新的离心管中，加入0.8倍体积的异丙醇，颠倒混匀。
8）-20℃放置15min。
9）4℃下13000g离心10min，管底的白色沉淀即为RNA。
10）吸除液体，加入75%乙醇1.5ml洗涤沉淀。
11）4℃下13000g离心5min。
12）将液体吸除干净，将离心管置于超净台上吹3min。
13）加入20μl无RNA酶的水溶解RNA。
14）55℃孵育5min。
2、反转录（枪头和PCR均经过湿热灭菌，无RNA酶）
1）取一PCR管，加入含2μg RNA的溶液。
2）加入1μl oligo(dT)15。
3）用无核糖核酸酶的去离子水补足至12μl。
4）于PCR仪上70℃保温5min，迅速置冰上冷却。
5）依次加入4μl 5×buffer，2μl 10mM dNTPs，1μl RNA inhibitor和1μl 反转录酶，用枪抽吸混匀。
6）于PCR仪上42℃保温60min，结束后80℃保温5min灭活反转录酶。
3、定量PCR
1）取0.2ml PCR管，配制如下反应体系，每个反转录产物配制3管。
2× qPCR Mix 12.5μl
7.5μM基因引物 2.0μl
反转录产物 2.5μl
ddH2O 8.0μl
2）取0.2ml PCR管，配制如下反应体系，每个反转录产物配制3管。
2×qPCR Mix 12.5μl
7.5μM内参引物 2.0μl
反转录产物 2.5μl
ddH2O 8.0μl
3）PCR扩增
预变性 95℃，10min
循环（40次） 95℃，15s→60℃，60s
溶解曲线 75℃→95℃，每20s升温1℃
4、结果处理
ΔΔCT法：
A=CT(目的基因，待测样本)- CT(内标基因，待测样本)
B=CT(目的基因，对照样本)- CT(内标基因，对照样本)
K=A-B
表达倍数=2-K
real-time PCR实验检测
注意事项
1、长度：15—30bp。
2、G十c含量：应在40%一60%之间。
3、碱基分布的随机性
4、引物自身：不要含有自身互补序列，否则会形成发夹样二级结构。
5、引物之间：两个引物之间不应有多于4个的互补或同源碱基，不然会形成引物二聚体，尤应避免3’端的互补重叠。
6、上下游引物的互补性：一个引物的3‘末端序列不允许结合到另一个引物的任何位点上。
7、3’末端：如果可能的话，每个引物的3‘末端碱基应为G或C。
8、设计RT-PCR的引物时，上下游引物要跨内含子，以消除基因组DNA的干扰。
9、引物设计好后再NCBI上进行序列比对，检查是否可能有错配产物扩增。
10、引物设计要注意种属。
