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小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)原代培养实验

时间:2017-6-23阅读:1033
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小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)原代培养实验 

实验步骤
一、取得小鼠胚胎

1.  性成熟母小鼠与种公鼠按1公(♂):2母(♀)比例合笼。

2.  每天早上观察母小鼠口。有乳白色或蛋黄色冻胶状物(栓)即确定为怀孕。见栓当天上午定为怀孕的0.5d。

3.  取怀孕12.5~14.5 d母鼠,断颈处死,无菌条件下暴露子宫。

4.  用镊子提起近子宫颈端,分离子宫系膜,剪断子宫角。


5.  取出整个子宫,置于有PBS的平皿内。用PBS洗涤三次,弃除表面残余血迹。

6.  沿子宫系膜侧剪开子宫,取出带有胎膜的胚胎,置于另一盛有PBS的平皿内,充分洗涤,弃除表面红细胞。

7. 用小镊子撕破胎膜,取出胎鼠,弃除胎膜,用PBS洗涤三次。

8. 去除胚胎头部、内脏和四肢,将躯干部置于另一盛有PBS的平皿内,用PBS至少洗涤三次,充分弃除红细胞。

二、取得小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)

1.  用无菌眼科小剪刀或刮胡刀片将鼠胚躯干剪(切)成1mm3以下的碎块,吸置于离心管内。

2.  加适量*,将离心管置于培养箱中10-20分钟

3.  取出离心管,反复吹打,加足量培养液终止消化。

4.  离心1000转,5分钟。

5.  弃掉上清,加适量培养液,反复吹打20次。

6. 分装到T75中,一般每2个胚胎可以制成一个T75的原代细胞。

7. 置37℃、5%CO2、饱和湿度培养箱培养。

8.  待细胞长3-7天细胞互相重叠爬满整个培养瓶底时即可1:3-1:6传代。

9.  吸弃培养液上清。

10. PBS(不含钙镁)冲洗两次。

11.  加0.25%*-0.02EDT消化。

12.  在显微镜下观察,当少量细胞漂浮,贴壁的细胞层出现裂隙时,用移液管吹打冲洗瓶底5-6次。

13.  即刻加MEF培养液终止消化。

14. 1000转,5分钟离心。吸弃上清。

15.  加足培养液,吹打制成单细胞悬液,分装到各T75中。完成传代。

16.  原代细胞中还有少量组织块未被充分消化,在以后的每次传代过程中要尽量制成单细胞悬液,组织块会逐渐消失。

17.  原代细胞中混有一些杂细胞,一般传到第3代时,杂细胞逐渐减少。小鼠胚胎成纤维细胞为梭状;但连成片时,细胞互相交联,形态不典型。

三、MEF的冻存

1.  当细胞 90%-100% 融合时,尤其细胞少量堆聚可冷冻。

2.  处理方法同二的9-14,每75 cm2 的细胞 加3 ml 冻存液重悬细胞。

3. 每个冻存管编号加1 ml细胞悬液。

4. 置入程序降温盒-80℃过夜,放入液氮长期保存。

四、灭活MEF制备饲养层细胞

1.  取新的培养瓶,加0.1% Gelatin溶液覆盖预处理30分钟,用前吸掉Gelatin溶液。

2.  取需要处理的MEF细胞,以10ug/ml浓度加(Mitomycin C)混匀。

3.  置培养箱中3小时。

4.  吸弃废液。

5.  用DPBS洗5遍。

6.  处理方法同二11-14。

7.  处理过的MEF加适量培养液重悬计数,以3.0×104/ cm2(MEF)铺在Gelatin处理过的培养瓶上。

8.  置培养箱中静置过夜,使其贴壁。

9.  铺好的饲养层在1-7天内有效,都可以支持mES生长并维持其性
 

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