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小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒【Mouse Ovarian PrimaCell: Normal Ovarian Firbroblasts】
     小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒图片卵巢是雌性动物的生殖器官。卵巢的功能是产生卵以及类固醇激素。其中，小鼠卵巢成纤维细胞分离自正常小鼠卵巢结缔组织，小鼠卵巢成纤维细胞传0代以上仍可以保持原代细胞的分化状态，进而可以用于评估体外药物模型系统和调节特定基因的遗传功能 利用本公司试剂盒中提供的卵巢组织分离体系来分离，EDTA/EGTA处理过的卵巢组织能使得卵巢组织中成纤维细胞的一些功能特性发生改变，从而将成纤维分离开来。

本试剂盒适用于分离培养小鼠卵巢成纤维细胞。本体系提供了佳的组织分离条件，分离单个细胞的效率是已出版文献中所报道的5~6倍。此外，本体系还能保证所分离的细胞在培养基中具有很高的活性。 小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒适合于培养小鼠的卵巢成纤维细胞。本试剂盒包含： （）OptiTDSTM小鼠卵巢成纤维细胞组织解离液 (3×ml) （2）小鼠卵巢成纤维细胞组织处理缓冲液（00ml） （3）小鼠卵巢成纤维组织洗液(5 x 00 ml) （4）小鼠卵巢成纤维细胞生长因子（ml500x）及血清（5x0ml） （5）小鼠卵巢成纤维细胞基础培养基(5 x 00ml) （6）小鼠卵巢成纤维细胞组织预备液 ( x 00 ml) （7）小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒使用说明书
培养步骤：
小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒图片对于贴壁细胞，传代可参考以下方法：
. 弃去培养上清，用不含钙、镁离子的PBS润洗细胞-2次。
2. 加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培养瓶中，置于37℃培养箱中消化-2分钟，然后在显微镜下观察Ⅱ型肺泡上皮细胞|细胞消化情况，若细胞大部分变圆并脱落，迅速拿回操作台，轻敲几下培养瓶后加少量培养基终止消化。
3. 按6-8ml/瓶补加培养基，轻轻打匀后吸出，在000RPM条件下离心4分钟，弃去上清液，补加-2mL培养液后吹匀。
4. 将细胞悬液按：2到：5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
对于悬浮细胞，传代可参考以下方法：
方法一：收集细胞，000RPM条件下离心4分钟，弃去上清液，补加-2mL培养液后吹匀，将细胞悬液按：2到：5的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。
方法二：可选择半数换液方式，弃去半数培养基后，将剩余细胞悬起，将细胞悬液按：2到：3的比例分到新的含8ml培养基的新皿中或者瓶中。​

人子宫平滑肌细胞*培养基00mL

香菇 Lentinula edodes

绒猴EBV转化的白细胞英文名称：

根霉属 Rhizopus sp.

球孢白僵菌 Beauveria bassiana

H4-II-E-C3(大鼠肝细胞 )5×06cells/瓶×2

酿酒酵母 Saccharomyces cerevisiae

少孢根霉

人肾系膜细胞*培养基00mL

SW 990 [SW-990, SW990] , 人胰腺细胞

小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒图片,4-双(4--2-三氟氧)分子式：428.33英文名称：,4- bis (4- amino group -2- three：94525-05-0分子量： C20H4F6N2O2

-(4-苄)咪唑分子式：73.2英文名称：- (4-)：56643-85-7分子量： C0HN3

5-溴-2-氯嘧分子式：93.43英文名称：5- -2- chloride：32779-36-5分子量： C4H2BrClN2

2-乙吡分子式：05.3英文名称：2- vinyl pyridine：00-69-6分子量： C7H7N

丙分子式：8.8英文名称：Xi Bingben：300-57-2分子量： C9H0

4--2,6-二氯吡分子式：63英文名称：4- two -2,6-：250956分子量： C5H4Cl2N2

N-乙酰啉分子式：29.6英文名称：N- acetyl morpholine：696-20-4分子量： C6HNO2

异戊硫英文名称：Isoamyl mercaptan分子式：04.2分子量： C5H2S：54-3-

3-羟-2,5-二甲-4-吡甲醛分子式：5.6英文名称：3- hydroxy -2,5- two methyl -4- pyridine formaldehyde：849-49-6分子量： C8H9NO2

2-溴-5-溴甲噻唑分子式：256.95英文名称：2- -5- bromide bromine methyl thiazole：3748-9-9分子量： C4H3Br2NS

注意事项：
. 接收到小鼠卵巢成纤维细胞培养试剂盒图片，肉眼观察细胞培养基颜色，显微镜观察细胞生长情况，并对细胞进行不同倍数拍照（建议收到时的培养瓶拍一张照片，显微镜拍收到时的细胞00X,200X各一张）。
2.用75%的酒精消毒（建议配置75%的酒精的水是灭菌过的）。
3.严格无菌操作，打开细胞培养瓶。
4.将细胞培养瓶内的培养基用吸管*吸出（严禁直接倾倒），放入另一无菌容器中（建议换新的培养基培养细胞）。
5.用PBS 2-3ml/次轻轻洗细胞表面，洗3-4次遍，加入0.05%-EDTA-.5ml,显微镜下观察细胞变圆，轻轻拍打培养瓶直到细胞脱落，加入终止液终止。
6.000rpm，5min离心，重悬细胞。
7.换新的细胞培养瓶，37℃，5%CO2培养。