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抗体/蛋白A或/蛋白G微珠层析柱制备的操作方法

阅读:1201发布时间:2010-9-14

1.准备工作
应用抗体柱对各种蛋白质进行亲和纯化的zui主要特点是在足够温和的条件厂就能将抗原从柱上洗脱下来,并能保持蛋白质的结构和/或功能不改变。连接抗原和抗体的结合键的类型和数量是决定洗脱难易的关键。在制备大规模层析柱用于纯化之前,有必要对所有可利用的抗体进行测试,并从中选择适当的抗体制备亲和层析柱。
建议不应将抗体流经含有微珠的层析柱,因为这样会使抗体形成·个浓度梯度,从析柱1:而的浓度高,而下面的浓度低。为避免这种情况,应将抗体与微珠混合成泥浆状而使其结合。
2.所需的溶液、试剂和特殊设备
抗体;蛋白A或蛋白G微珠;0.2mol/ml硼酸钠(pH9.0);二甲基庚二酸(DMP);PBS;0.2mol/L乙醇胺(pH8.0);考马斯亮蓝;Laemmli样品缓冲液;摇床。
3。操作步骤
(1)将抗体与蛋白A或蛋白G微珠结合,一般使用的层析柱,每毫升湿的微珠大约可结合2mg的抗体。将抗体与蛋白A/G微珠混合,使其成为一种稀薄的浆状。在10ml溶液总量中大约含lml微珠。轻轻振荡混匀,室温孵育1h。
如前所述,免疫亲和层析柱一般用单抗或经过亲和纯化的多抗制备。可以用不同来源的抗体,包括杂交瘤细胞培养上清液、腹水或纯化的抗体溶液, 由于与蛋白A/G微珠结合,可作为去除贮存缓冲液或交换缓冲液中其他物质的步骤。
如果需知道与微珠结合抗体的准确浓度,在与微珠结合之前应对抗体进行纯化。
(2)用10倍体积的0.2mol/L硼酸钠缓冲液(pH9.0)洗涤微珠2次,以3000g离心5min,或10 000g离心30s。
(3)用10倍体积的0.2mol/L硼酸钠(pH9.0)重悬微珠,并取出相当于10u1微珠的混悬液。加足量的DMP(固体)至终浓度为20retool/L。
如用DMP交联,应为pH 8.3以上。
(4)轻轻混匀,室温孵育30min,取出相当于10txl已偶联的微珠。
(5)用0.2mol/L乙醇胺洗涤微珠1次,以终止反应。然后用0.2mol/L悬微珠,室温孵育2h,轻轻混匀。
(6)再次洗涤后,用含0.01%硫柳汞的PBS重悬微珠。
(7)检测微珠样品与抗体结合前后的结合效率,将样品分别加入Laemmli样品缓冲液中煮沸。分别取出相当于1/Il和9btl的两种样品,在10%SDS-聚丙烯酰胺凝胶中进行电泳,用考马斯亮蓝染色。结合前样品呈现重链区带(分子质量为55kDa)而结合后样品则无,表明交连成功
亲和层析柱在含硫柳汞缓冲液中置4C可保存1年以上。制备好的微珠即可用于抗原的免疫亲和纯化。
 

凝胶结合效率

 


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