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植物油中黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2测定的实验步骤

阅读:2331发布时间:2010-10-21

实验步骤
一、提取
        粮食类(花生、玉米等):称取20g粉碎过筛样品(面粉不需粉碎)。置于250ml具塞锥形中,加30ml正已烷或石油醚和100ml甲醇-水溶液,润湿瓶塞,盖紧颜漏,振摇30min,静置分层,以叠成折叠式快速定性滤纸过滤于带刻度的125ml分液漏斗中,待下层甲醇-水溶液分清后,放出20ml甲醇-水溶液于第二个125ml分液漏斗内,并加入20ml三氯甲烷,振摇2min。静置分层,如出现乳化现象可滴加少许甲醇促使分层,将三氯甲烷层通过装有约10g*玻璃漏斗后,流入全玻璃浓缩瓶中,然后用数毫升三氯甲烷洗涤*层,一并收集于浓缩瓶内,在60~70℃水浴中减压浓缩至干后,用苯-乙腈混合液定容至1.0ml,即为分析样液。
花生油、香油、菜油等:称取4 g油样于小烧杯中,用20ml正已烷或石油醚将油样全部转至125ml刻度分液漏斗中,再用20ml甲醇-水分次洗烧杯,洗液一并转至上述分液漏斗内,振摇2min,静置分层后,将下层甲醇-水放入第二个125ml刻度分液漏斗中,在原分液漏斗中再加5ml甲醇-水溶液重复提取一次,提取液一并移入第二个分液漏斗中,并在第二分液漏斗中加入20ml三氯甲烷,以下按“花生、玉米等粮食类”自“振摇2min,静置分层”起依法操作。
二、薄层层析
(1)、薄层板的制备:称取约14g硅胶G加36~40ml水,在研钵中研成糊状后立即倒入涂布器内,可涂成厚度约0.25mm的5 cm×20cm玻璃板8块,或10cm×20cm玻璃板4块,或20cm×20cm玻璃板2块,室温干燥约15min后,置105~110℃烘箱内活化1 h,取出,放于干燥器内备用,放置时间超过一周时,需重新活化后再用。
(2)、初步层析与确证
(2)-1、衍生物法:黄曲霉毒素B1和G1能与二氟乙酸反应产生衍生物(其比移值B1>G1)。B2、G2不起反应。于一块5 cm×20cm的薄层板上,以距薄层板下端3 cm为基线,自左端约1 cm起沿基线1 cm等距点四个点,*点为2μl标准混合使用液;第二点为20μl样液;于以上两点各加三氟乙酸1小滴,反应5min后,用低于40℃热风吹2min,冷却后,再依次点第三点为2μl混合标准使用液;第四点为20μl样液;吹干。将薄层板放入装有10ml乙醚的展开槽内,展至13cm处,取出吹干后,再用10ml丙酮-三氯甲烷(1+9)展开剂再展一遍,取出吹干后,在紫外光下观察样液是否产生与黄曲霉毒素B1、G1标准点相同的衍生物,未加三氟乙酸的三、四两点,可依次作为样液与标准的衍生物空白对照。
(2)-2、黄曲霉毒素G1和G2的确证:可用苯-乙醇-水(46+35+19)展开,若标准点与样液点出现重叠,即可确定。
(2)-3、在展开的薄层板上喷以硫酸(1+3),吹干后,则黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2都变为黄色荧光。
三、定量测定:经确证的阳性样品进行薄层分离和定量测定。
(1)、连续层析法
*点板:将10cm×20cm的薄层硅胶板用橡皮刮塞刮去左右两边硅胶层各1 cm,以距底边1.5cm处为基线。自左1 cm开始,以1 cm间距依次滴加黄曲霉毒素混合标准使用液1,3,5,7,10μl,依次相当于B1、G1 0.2,0.6,1.0,1.4,2.0ng;B2、G2 0.1,0.3,0.5,0.7,1.0 ng和样液点。滴加样液体积依样品含黄曲霉毒素含量而定。
**展开:室温20℃,相对湿度约70%条件下,按以下条件进行连续层析分离。
乙醚饱和:7min;
预展:10min;
丙酮-三氯甲烷(7+93)饱和:10min;
展开:15min后,取出吹干。
***观察:于紫外光下,在标准点和与标准比移值相同的样液点下方,用针尖轻刺标记,以确定各点的扫描起点,然后进行扫描测定。
****双向展开法
****点板:于20cm×20cm薄板上.

提示:本文植物油中黄曲霉毒素B1、B2、G1、G2测定方法属于生化实验文章,主要介绍黄曲霉方面的知识,内容仅供学习交流与参考.


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