实验步骤
一、酵母菌糖发酵试验
1) 糖发酵基础液配制好后,按培养液容量的1%加入糖,分装于杜氏发酵管中(培养液的高度约为4-5厘米),再在试管内加入倒置的小玻管(约0.4×2.0-2.5厘米)一支。每种糖设三个重复管,<121℃>高压灭菌15分钟。细胞
2) 将酵母分别接入上述各发酵管中,置<30℃>下培养48-72小时,另以不接种者作对照
3) 如产酸则培养液pH值下降而变黄色;如产气,则必先产酸,并在杜氏小管顶端出现气泡。
4) 结果记录。以“ "表示产酸,“<0">表示产气,“+"表示产酸产气,“-"表示无变化,“碱"表示产碱。
二、酵母菌碳源同化试验
生长图谱法
1) 无碳培养基内加入2%的水洗琼脂,融化后冷却至45<-50℃>,到至平板。
2) 接种新鲜培养的啤酒酵母于1毫升无菌生理盐水内,搅匀后倒入上述未凝平板内,摇匀待凝。
3) 皿底用特种蜡笔写上被测试各种碳源的标记。
4) 用不锈钢匙,按标记加入相应的米粒大小的碳源,并以葡萄糖作对照。
5) <28℃>下培养24-48小时后观察结果。
三、酵母菌氮源同化试验
1、液体试管法
方法同二,以被测试的氮源代替碳源,不加任何氮源作空白对照。
2、生长图谱法
方法同二,以被测试的氮源代替碳源,不加任何氮化物作空白对照。
3、结果观察
1)液体试管中溶液pH值的变化。
2)生长图谱中测量形成菌落的大小,说明对各种氮源的利用情况。
四、酵母菌生长曲线的测定试验
1、将培养24小时左右的酵母斜面菌种,用无菌水洗下菌苔,以3000转/分的速率离心,得菌体。将酵母菌体沉淀物再用无菌水洗2-3次后,制备酵母菌悬液(细胞数量约106左右/毫升),测数备用。
2、取上述菌悬液1毫升于盛有清亮的酵母增殖培养液的试管中,<25℃>下培养,以此为起始时间,记录起始溶液的细胞数。并在培养1,2,4,6,8,9,10,11,12,14,16,20,22,24小时时分别取样检测酵母菌细胞数量。
3、酵母菌细胞数量的检测
方法①:活菌计数法。此法是将以上定时取出的被检样品作一系列稀释后,取一定量体积(在0.1-1毫升之间)的稀释液涂布于盛有固体培养基的培养皿内,在<25℃>下培养24小时左右,计算培养皿内菌落数就可测出溶液中活菌数量。
方法②:血球计数板计数法。此法是先将以上定时取出的被检样品作一系列稀释后,使菌落数约为105-106个/毫升,取一滴稀释液滴于血球计数板内,在显微镜下直接计算细胞总数。
4、绘制生长曲线
以酵母菌细胞数的对数作为纵坐标,以培养时间作为横坐标,画出酵母菌的生长曲线。并分析酵母菌群体的生长规律。