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Cell Meter TUNEL凋亡检测试剂盒红色荧光光谱及实验方案

时间:2023/6/8阅读:59
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Cell Meter TUNEL凋亡检测试剂盒 红色荧光是美国AAT Bioquest研发的用于检测细胞凋的试剂盒,DNA片段化代表晚期细胞凋亡的特征。该试剂盒可提供所有必需成分,并具有优化的测定方案。适用于荧光酶标仪,荧光显微镜或流式细胞仪。百萤生物AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的细胞凋亡检测试剂盒。

光谱:

光谱性质

消光系数:  27500

Ex:       549 (nm)

Em:      648

适用仪器

流式细胞仪

Ex:       488 nm

Em:     660/20 nm  

通道:     PE-Cy5 通道

荧光显微镜

Ex:        TRITC 滤波片组

Em:       TRITC 滤波片组

推荐孔板:      黑色透明底板

荧光酶标仪

Ex:        550 nm

Em:        590 - 650 nm

Cutoff:     570 nm

推荐孔板:    纯黑色孔板

实验方案

样品实验方案

简要概述

1. 用测试化合物准备细胞。

2. 与TUNEL工作溶液在37°C下孵育30分钟至1小时。

3. 洗涤细胞。

4. 用4%甲醛(可选)固定细胞。

5. 用带FITC滤光片的荧光显微镜或带FITC通道的流式细胞仪。读取Ex / Em = 490/525 nm(截止= 515 nm)处的荧光强度。

 溶液配制 

工作溶液配制

将0.5μL的100X Tunnelyte Green(组分A)添加到50μL的反应缓冲液(组分B)中,使总体积为50.5μL的TUNEL工作溶液。 避光。 注意:应单独评估每个细胞系,以确定细胞密度。 

实验步骤

1.根据您的特定协议,将细胞培养至密度以诱导凋亡。 对于在96孔板培养物中生长的贴壁细胞,我们建议大约30,000至50,000个细胞/孔,对于非贴壁细胞,建议大约1至2 x 106细胞/ mL。 同时,在每种标记条件下,用诱导群体相同的密度培养非诱导阴性对照细胞群体。 注意:我们用100 nM-1 µM星形孢菌素处理HeLa细胞4小时,以诱导细胞凋亡。

2.染色和固色:

2.1取出细胞培养基。
2.2向每个样品中添加50µL TUNEL工作溶液。
2.3在37°C下孵育30-60分钟。
2.4除去TUNEL工作溶液,并用200 µL /孔的PBS洗涤细胞1-2次。
2.5向每个样品中添加100uL反应缓冲液(组分B)。
2.6使用Ex / Em = 550/590-650 nm(Cut off= 570 nm)的荧光酶标仪,带TRITC滤光片的荧光显微镜或带FL3通道的流式细胞仪检测荧光强度。
2.7可选:从步骤5中移出反应缓冲液,并向每个孔中添加100 µL /孔/ 96孔板的4%甲醛固定缓冲液(未提供)。注意:对于非贴壁细胞,请添加所需量(例如2X106细胞/ mL)的4%甲醛固定液。
2.8在室温下将平板孵育20至30分钟。
2.9去除固定剂。
2.10用PBS洗涤细胞2-3次,并用100µL PBS /孔/ 96孔板替换。
2.11使用Ex / Em = 550/590-650nm(Cut off= 570 nm)的荧光酶标仪,带TRITC滤光片的荧光显微镜或带FL3通道的流式细胞仪检测荧光强度。
2.12可选:用1X Hoechst(组分C)在Ex / Em = 350/460 nm处染色细胞核,以进行图像分析

图1.与未处理的对照相比,用 100 nM 或 1 μM 星形孢菌素 (SS) 处理 4 小时后 HeLa 细胞中 TUNEL 反应的荧光图像。细胞与 TUNEL 工作溶液在 37ºC 下孵育 1 小时。使用具有 TRITC 滤光片组的荧光显微镜分析红色荧光信号。荧光标记的 DNA 链断裂在 SS 处理的细胞中显示出强烈的荧光染色。

图2. TUNEL 染色定义的 BM 中凋亡的 PCa 细胞。PCa细胞被泛细胞角蛋白识别为绿色,TUNEL信号以红色显示。比例尺,20 微米。资料来源:Axl 是 TGF-β2 诱导的骨髓中前列腺癌细胞休眠所必需的, Yumoto 等人,《科学报告》,2016 年 11 月。


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