方法步骤：
1） 经BamHI 及HindIII 作用的pBlueGus 及pQE31，置65℃水浴10 min，移至冰浴降温后，以含EtBr 的1.0% agarose gel 进行电泳。
2） NA 45 以灭过菌的剪刀剪成适当大小，置于培养皿中，以10 mM EDTA-8.0浸泡处理10 min，继以0.5 M NaOH 处理5 min。 以无菌水快速清洗五、六次后，浸泡于无菌水中，置于4℃可保存数周。
3） 电泳后的胶片以EtBr 染色后，以长波长UV 灯观察DNA 片段所在位置，并在DNA 色带前后切一刀，以扁平药匙辅助将NA 45 插入DNA 前后的切缝中；再以UV 灯观察NA 45 插入的位置是否恰当。
4） 将胶片置回电泳槽中，以100 V 进行电泳约10 min （时间随NA 45 位置与DNA 距离而定）；以UV 灯观察DNA 是否*吸附到NA 45。
5） 将NA 45 取出，浸于NET中漂洗以去除附着于NA 45 的胶体 （可用微量移液器头末端将胶体轻轻去除），再移置于微量离心管中 （每2~3 片置于一管中），吸去多余的液体。
◆ 注意！ 不可让NA 45 干掉，否则DNA无法被溶离下來。
6） 加入0.3 mL high salt NET，于68℃加热40 min，其间不时震荡。
◆ NA 45 膜片避免重迭在一起，并且必须*浸泡于溶液中。
7） 将溶液吸出，原管中的NA 45 再加入300 μL high salt NET，于68℃加热10min。
◆ 以下的步骤常容易出错，请务必分清楚离心后该取上层或下层溶液，请先保留各部份的溶液，确定无误后再丢弃。
8） 将两次溶离液合并，加入等体积的n-butanol，震荡混合，以12,000 rpm 离心5 min。离心后应可分为两层，DNA 溶液在下层。仔细观察管底是否有沉淀，吸取下层溶液至另一离心管，避免吸到沉淀。 这时DNA 溶液体积应该减少，可以把两管或三管的溶液合并成一管。
◆ 溶离后的NA 45 请以UV 照射检查是否仍有DNA 残留。
9） 加入等体积的PCI，震荡混合，以12,000 rpm 离心5 min。
10） 吸取上层水溶液至另一离心管，原管中加入等体积的TE-8.0，混合均匀，以12,000 rpm 离心2 min。将上层液吸出。
11） 合并上层液，加入等体积CI，震荡混合，以12,000 rpm 离心2 min。
12） 将上层溶液吸出，加入0.2 倍体积的10 M NH4OAc，2.5 倍体积的酒精，置 -20℃沉淀至少 30 min。
13） 以12,000 rpm离心20 min （4℃），沉淀以 -20℃预冷的70%酒精洗两次，以同转速离心2 min。
◆ 倒掉上清时请小心，不要让沉淀流失！ 沉淀通常很少，且因纯度高，沈淀几近透明，不易察看；上清吸到另一微量试管中暂时保留。
14） 沉淀干燥后溶于20 μL TE-8.0 中。
15） 取一个直径3 cm 的培养皿，加入5 mL TE-8.0。以平端镊子小心夹取VSWP滤膜，将滤膜的光亮面朝上置于液面上。 将溶离的DNA 溶液加在膜上，静置透析至少30 min 以去除残留的盐。