克隆PCR产物问题与解答

1. 问题：RT-PCR灵敏度：在琼脂糖凝胶分析中看到少量或没有RT-PCR产物。 
可能原因： 
1）RNA被降解 
建议解决方法： 
在用来验证完整性之前先在变性胶上分析RNA使用良好的无污染技术分离RNA； 
在将组织从动物体取出后立刻处理在100％甲酰胺中储存RNA； 
如果使用胎盘RNase抑制剂，不要加热超过45℃或pH超过8.0，否则抑制剂或释放所有结合的RNase。而且，在≥0.8mM DTT时加入RNase抑制剂，一定要存在DTT。 
2）RNA中包含逆转录抑制剂 
建议解决方法： 
通过乙醇沉淀RNA除去抑制剂。用70％（v/v）乙醇对RNA沉淀进行清洗。可以加入糖元（0.25μg到0.4μg/μl）以帮助小量样品RNA的恢复。 
逆转录抑制剂包括：SDS，EDTA，甘油，焦磷酸钠，spermidine，甲酰胺和胍盐。 
将对照RNA同样品混合，同对照RNA反应比较产量以检验抑制剂。 
3）多糖同RNA共沉淀 
建议解决方法： 
使用氯化锂沉淀RNA以除去多糖。 
4）用于合成cDNA*链合成的引物没有很好退火 
建议解决方法： 
确定退火温度适合您的引物。对于随机六聚体，建议在反应温度保温之前先在25℃保温10分钟。 
对于基因特异性引物（GSP），可以试一下其他GSP，或换用oligo(dT)或随机六聚体. 
确定GSP是反义序列。 
5）起始RNA量不够 
建议解决方法： 
增加RNA量。 
对于＜50ng的RNA样品，可以在*链cDNA合成中使用0.1μg到0.5μg乙酰BSA。 
6）RNA模板二级结构太多 
建议解决方法： 
将RNA和引物在不含盐及缓冲液条件下变性/退火. 
提高逆转录反应温度，对SuperScriptⅡ可以到50℃，对ThermoScript可以到65℃。 
注意：不要在＞60℃时使用oligo(dT)引物，选择一个在反应温度可以退火的GSP。对于＞1kb的RT-PCR产物，保持反应温度≤65℃。 
注意：不要在高于37℃时使用M-MLV。 
如果不需要全长cDNA，在*链反应中使用随机引物。 
7）引物或模板对残余的RNA模板敏感 
建议解决方法： 
在PCR前用RNaseH处理。 
8）靶序列在分析的组织中不表达 
建议解决方法： 
尝试其他靶序列或组织 
9）PCR没有起作用 
建议解决方法： 
对两步法RT-PCR，不要在PCR步骤中使用超过1/5的逆转录反应产物。 

2.问题：PCR灵敏度：在琼脂糖凝胶分析中看到少量或没有RT-PCR产物。 
可能原因： 
1）PCR引物设计较差 
建议解决方法： 

避免在引物3"端含有互补序列。避免可以形成内部发卡结构的序列。设计Tm类似的引物。 
2）DNA含有抑制剂 
建议解决方法： 
诸如DMSO，SDS和甲酰胺之类的试剂会抑制Taq DNA聚合酶。如果怀疑污染了抑制剂，可以使用乙醇沉淀DNA。 
3）富含GC的模板 
建议解决方法： 
对于GC含量＞50％的模板，使用PCRx Enhancer Solution。 
4）模板浓度太低 
建议解决方法： 
使用104拷贝的靶序列，以在25到30个循环中获得信号。 
5）镁离子浓度太低 
建议解决方法： 
从1mM到3mM，间隔0.5mM进行一系列反应，确定对于每个模板和引物对的镁离子浓度。注意：对实时定量PCR，使用3mM到5mM的镁离子浓度。 
6＝退火温度太高 
建议解决方法： 
使用表4的公式估算Tm，把退火温度设定为低于Tm 5℃。因为这些公