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糖原 PAS 过碘酸雪夫染色试剂盒
产品简介:
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus 在 1946 年zui先使用高碘酸-雪 夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色液不仅能够显示糖原,还能显 示中性黏液性物质和某些酸性物质,以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基 底膜等。
过碘酸(高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的 1,2-乙二醇基,使 之变为二醛,醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧 化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在即能把乙二 醇基氧化成醛基,又不至于过氧化,这是很关键的步骤。
本糖原 PAS 染色试剂盒的特点;采用森贝伽*配方技术,大大增强了染色效果; 性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需 1h。
产品组成:
编号 | SBJ0005 | SBJ0005 | SBJ0005 | STORAGE |
试剂(A): 过碘酸水溶液 | 50ml | 100ml | 500ml | 4℃ |
试剂(B): Schiff 试剂 | 50ml | 100ml | 500ml | 4℃ |
试剂(C): Lillie-Mayer 苏木素染色液 | 50ml | 100ml | 500ml | RT |
试剂(D): 盐酸乙醇分化液 | 50ml | 100ml | 500ml | RT |
使用说明书 | 1 份 |
主要成分:
试剂(A): 主要由 1%过碘酸组成。
试剂(B): 主要由碱性品红、偏重亚硫酸钠、活性碳等组成。
试剂(C): 主要由苏木素、乙醇、甘油等组成。
试剂(D): 主要由 1%盐酸、乙醇等组成。
自备试剂:
1、蒸馏水或去离子水
2、95%乙醇
3、无水乙醇
4、封片剂
操作步骤(仅供参考):
1、常规固定,常采用 10%的福尔马林,常规脱水包埋。
2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片入蒸馏水。
3、自来水冲洗 2~3min,再用蒸馏水浸洗 2 次。
4、置于试剂(A)中,室温放置 5~8min,一般不宜超过 10min。
5、自来水冲洗 1 次,再用蒸馏水浸洗 2 次。
6、 样本放入 森贝伽 试剂(B),置于室温阴暗处,浸染 l0~20min。
7、 自来水冲洗 10min。
8、样本置于试剂(C)中,染核 1~2min。
9、试剂(D)分化。
10、自来水冲洗 l0~15 分钟后,更换双蒸水清洗,使其返蓝。
11、逐级常规乙醇脱水。
12、二甲苯透明。
13、中性树胶封固。
染色结果:
PAS 反应阳性物质(糖原或多糖)均呈红色或紫红色;细胞核呈蓝色;细胞 质、肌纤维、胶原纤维等呈深浅不一的红色;其颜色深浅取决于样品在高碘酸和 Schiff 试 剂中作用时间的长短。
注意事项:
1、切片脱蜡应尽量干净。
2、过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以 18-22℃*,其 PH 应在 3~5 之间。
3、试剂(A)与试剂(B)应置于 4℃,密闭保存,使用时避免接触过多的阳光和空气,
4、试剂(A)与试剂(B)使用前,提前 30min 取出恢复到在室温后,避光暗处使用。
5、森贝伽* Schiff 试剂在室温过低(小于 15℃)情况下,反应缓慢,可以置于适宜温水
(小于 30℃)中恢复后再使用。
6、盐酸乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和盐酸乙 醇分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
7、在高碘酸和 Schiff 试剂中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
8、本试剂盒常用于组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议采购 森贝伽 SBJ0006 糖原 PAS 染色试剂盒(细胞真菌),因为其高碘酸溶液和苏木素溶液浓度 更低,不宜过染。
9、冷冻切片染色时间尽量要短。
10、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
11、使用场所应通风,并远离火源。
储存条件:常温运输,试剂(A)、试剂(B)应置于 4℃,避光保存,回复至室温后使用。试剂 (C) 、试剂(D),密闭,室温保存。6 个月有效。
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