1．用溶于PBS的2m1抗原（10—1000ug/m1） 包被免疫管，室温过夜。碳酸盐缓冲液也可使用。
2．用PBS洗涤试管3次，并用2％MPBS封闭非特异性结合位点，放在旋转的转台上，37℃l小时。
3．用PBS洗涤试管3次；加入lml滴度为10lz～1013的噬菌体抗体（稀释于lml 4％MPBS中），在旋转的转台上孵育30分钟，再静止1．5小时。
4．用PBS/PBS/Tween洗涤试管1次，并用PBS洗涤2次。每次洗涤是将缓冲液倒入和倒出试管。
5．加入1．Oml 100mmol/L三乙基胺，给试管加盖，然后再转台上转动8分钟。
6．将洗脱液转移至1个新试管中，并立即加入0．5mllmol/LTris—HCl（pH 7．4） 中和并混匀。
7．将一半体积的洗脱液（0．75m1）加入到10m1对数生长的大肠杆菌TGl或DH5αF，（A600值为0．5）中；37℃孵育培养液30分钟，不用振荡。
8．取1P1培养液在100mmTYE/amp/glu平板上铺板以滴定洗脱的噬菌体。
9．以4000r/minl5分钟离心剩余的培养液。重悬于0．5ml 2XTY培养基中，并在两块150mmTYE/amp/glu平板上铺板。
10．准备下一轮选择所需的噬菌粒颗粒：感染辅助噬菌体，但要将起始培养体积降至10m1（步骤1），并扩充培养体积至50ml。由于体积变小，可用台式离心机操作。将噬茵体重悬于终体积为1．Oml的PBS中，并用大肠杆菌TGl测定噬菌体滴度。
11．从步骤1开始，重复进行选择，共2～4轮。*轮过后，要增加洗涤的严谨性：洗脱前，用PBS/Tween洗涤20次并用PBS洗涤20；hQ。用PBS和PBS/Tween进行一次或两次时间为30分钟的洗涤步骤，也能提高严谨性。