包拉米虫感染荧光 PCR 检测试剂盒说明书

【资料简介】

1、 包拉米虫感染荧光PCR检测试剂盒简介 
货号：HB-910 
本试剂盒采用荧光PCR技术，检测组织样品总DNA中包拉米虫DNA。本试剂盒采用特异性的引物和
探针扩增目的基因，并制备了阳性对照用于结果判定，通过优化的反应体系，能够zui大限度地检测
包拉米虫核酸。
2、试剂盒组成 
试剂盒组成包括*和核酸扩增试剂，具体组成参见表 1：
表 1：试剂盒组成（50test/盒）
组成成分 体积
样品 DNA 提取液 1
样品 DNA 提取液 2
5ml×1 管
500µl×1 管
核酸扩增试剂： DEPC 水
包拉米虫荧光 PCR 反应液
Taq 酶(5U/ul)
阴性对照
包拉米虫荧光 阳性对照
5ml×1 管
750µl×1 管
40µl×1 管
1ml×1 管
1ml×1 管
*保存条件：样品 DNA 提取液 1、2 和试剂盒须在-20℃保存。 
3、样本采集，存放及运输 
3.1 样本采集：所用取样器材必须经高压灭菌并烘干。按相关检测标准*的方法，取贝类组
织30mg标记后置于离心管中,按照试剂盒配套的DNA提试剂操作说明提取DNA模板。
3.2存放：研磨后的样本在2 ℃-8 ℃条件下保存应不超过24 h；-70 ℃以下可*保存，但应避免
反复冻融（zui多冻融3次）。
3.3 运输：采用泡沫箱加冰密封进行运输。 
4、检测步骤 
4.1 DNA 核酸提取操作方法(在样本处理区进行)： 
4.1.1 取 n 个 1.5ml 灭菌 Eppendorf 管，其中 n 为待检样品数和一管阴性对照之和，对每个管进行
编号标记。(注：试剂盒中的阳性对照直接作为 PCR 检测的模板，无需提取核酸)
4.1.2 每管加入 100 µl DNA 提取液 1，然后分别加入待测样本和阴性对照各 100µl，一份样本换用一个吸头；混匀器上震荡混匀 5 s,于 4℃～25℃条件下，12 000 r/min 离心 10 min。
4.1.3 尽可能吸弃上清且不碰沉淀，再加入 10µl DNA 提取液 2，混匀器上震荡混匀 5s,于 4℃～25℃条件下，2 000 r/min 离心 10 s。
4.1.4 100℃ 干浴或沸水浴 10 min；加入 90µl DEPC 水，12 000 r/min 离心 10 min，吸取上清，即为提取的 DNA，冰上保存待用（提取的 DNA 需在 2 h 内进行 PCR 扩增或放置于-70℃冰箱内保存）。
4.2包拉米虫感染荧光PCR检测试剂盒 荧光 PCR 检测 
4.2.1 扩增试剂准备（在反应混合物配制区进行）：
从试剂盒中取出相应的 KHV 荧光 PCR 反应液、Taq 酶，2000×g 离心 5 秒钟。每个样品测试反应
体系配制见下表 2。
表 2 每个样品测试反应体系配制表
试剂 荧光 PCR 反应液 Taq 酶 合计
用量 14.5 μL 0.5μL 15μL
4.2.2 加样（样本处理区进行）：
向每个荧光 PCR 管孔中各分装 15μL 的混合液，再分别加入样本 DNA 模板 10μL，盖紧管盖，
500 r/min 离心 30 s。
4.2.3 PCR 检测（在检测区进行）：
循环条件设置：
*阶段，94℃/3 min；
第二阶段，92℃/15 sec，53℃/15 sec，60 o
C/30s ，40个循环，在每次循环的60o
C延伸时收集
荧光。试验检测结束后，根据收集的荧光曲线和Ct值判定结果。
5、结果判定 
5.1 结果分析条件设定
直接读取检测结果。阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整，以阈值线刚好超过正常阴性样
品扩增曲线的zui高点为准。
5.2 质控标准
5.2.1 阴性对照无 Ct 值或无扩增曲线。
5.2.2 阳性对照的 Ct 值应<28.0，并出现典型的扩增曲线。否则，此次实验视为无效。
5.3 结果描述及判定
5.3.1 阴性：无Ct值或无扩增曲线，示样品中无包拉米虫核酸。
5.3.2 阳性：Ct值≤30，且出现典型的扩增曲线，示样品中存在包拉米虫核酸。
5.3.3 有效原则：Ct>30的样本建议重做。重做结果无数值者为阴性，否则为阳性。
6、包拉米虫感染荧光PCR检测试剂盒相关技术信息 
Taqman 探针：5'-FAM-TTAGGTGGATAAGAGCCGC-MGBNFQ-3'
上游引物 F：5'-CCCTGCCCTTTGTACACACC-3'
下游引物 R：5'-TCACAAAGCTTCTAAGAACGCG-3'