A和我国农业农村部和国家市场监督管理总局GB 31650《食品安全国家标准食品中兽药最大残留*》中明确规定了杆菌肽在动物靶组织中的残留*。本文阐述了如何将杆菌肽从样品基质中分离提取出来，并经过净化后，转化成液质联用仪可以检测的形式。以提取、净化为重点，依据国标

猪肉、猪肝和猪肾液相色谱-质谱/质谱法方法原理：

0.01 g 0.1 mg10）；振荡器；4）10 mL具塞5025 μL和100 μL

LC-MS/MS+ESI

样品的制备与保存猪肝脏、肾脏要去除脂肪和其他的非肝脏、肾脏组织，猪肉要去皮和骨头，将其搅碎拌匀，分出将制备好的试样密封。℃条件下保存 

10 g20 mL经甲醇+水（1+1）饱和的0.0025 %双硫腙san氯甲烷溶液，于振荡器上剧烈振荡00 r/min min，取上清液10 mL于50 mL试管中，弃去其余上清液。

 min，移取全部上清液于另一60 mL离心管中。重复提取一次，合并上清液，混匀，以00 r/min min，取上清液30 mL与50 mL试管中的提取液合并，混匀。净化在预处理过的固相萃取柱（HLB 60 mg/3 mL用3 mL甲醇和3 mL水活化）顶部连接贮液器，移入上述试管中样液，待样液全部通过萃取柱后，加入2 mL水，弃去全部流出液。然后，将固相萃取柱在50 kPa℃水浴中用氮气吹干0.5 mL甲醇重新溶解残渣，再加入0.5 mL 0.3 %甲酸溶液，摇匀后，供液相色谱-串联质谱仪测定。国标解读及注意事项1.0.1 %0.1 m储备液℃℃保存3个月。

，HLB相当于样品进行上机检测。

4.通过两次水洗双硫腙san氯甲烷残渣，不仅可提高目标物的回收率，确保稀释倍数准确，还可以在合并上清液后降低甲醇比例，为下一步固相萃取净化做好准备。固相萃取过程中需要控制流速，使溶液一滴一滴地流下，以保证净化富集的效果。6.本方法使用基质标准工作溶液进行定量分析， 

参考文献GB/T 20743-2006 

图猪肉、猪肝和猪肾中杆菌肽残留量测定的前处理流程图